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Photolyase/Cryptochrom-Homologe aus Synechocystis sp. PCC 6803 und Arabidopsis thaliana: Funktion, Lokalisation und biochemische Eigenschaften

机译:来自Synechocystis sp。的光裂解酶/隐色同源物。 PCC 6803和拟南芥:功能,位置和生化特性

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摘要

In dieser Arbeit wurden Photolyase/Cryptochrom-homologe Proteine (cry und phr) aus dem Cyanobakterium Synechocystis sp. PCC 6803 und ein neues Cryptochrom (At-cry3) aus der Hoeheren Pflanze Arabidopsis thaliana charakterisiert. Synechocystis CRY liegt mit den offenen Leserastern sll1628 und sll1630 in einem Operon. Die durch sll1628 kodierte Aminosaeuresequenz besitzt eine schwache Homologie zu einem TPR (tetratricopeptide repeat)-Domaenen Protein; die sll1630 Aminosaeuresequenz ist zu keinem bekannten Protein homolog. Für das in E. coli heterolog exprimierte Synechocystis cry konnte nachgewiesen werden, dass es nicht kovalent FAD bindet. Die phr und cry Mutanten zeigten hinsichtlich Wachstum und Pigmentzusammensetzung weder unter photoautotrophen und heterotrophen Wachstumsbedingungen noch im Dauer-Blau- oder Rotlicht einen vom Wildtyp abweichenden Phaenotyp. Im UV-B ist in der cry Mutante im Gegensatz zur phr Mutante und dem Wildtyp die de novo Synthese fuer das D1 Protein des Photosystem II nicht induziert. In der cry Mutante ist ferner die Phototaxis zum Rot- und Dunkelrotlicht reduziert. Mittels quantitativer RT-PCR-Analysen wurde die lichtabhaengige Induktion der Transkription des psbA3 Gens, das fuer das Photosystem II D1 Protein kodiert, ueber einen großen Spektralbereich und beim Wechsel von niedriger zu hoher Fluenzrate untersucht. Unter den gewaehlten Lichtbedingungen ist mit Ausnahme von Dunkelrot in der cry Mutante die psbA3 Induktion abgeschwaecht, besonders drastisch im UV-A-Bereich. Somit wurde in dieser Arbeit gezeigt, dass sll1629 fuer ein Cryptochrom kodiert. Im zweiten Teil der Arbeit wurde das Protein At5g24850 (At-cry3) aus Arabidopsis thaliana untersucht. At-cry3 ist 569 Aminosaeuren gross und besitzt ueber einen Bereich von 400 Aminosaeuren ca. 50 Prozent Identitaet zu Synechocystis cry. Durch in vitro Import und GFP-Lokalisationsstudien wurde nachgewiesen, dass die N-terminalen 63 Aminosaeuren von At-cry3 notwendig und hinreichend fuer den Import dieses Proteins sowohl in Mitochondrien als auch in Chloroplasten sind. At-cry3 wurde als His-tag-Fusion heterolog in E. coli ueberexprimiert. Spektroskopische Analysen zeigten, dass At-cry3 nicht kovalent FAD bindet. Weder spektroskopisch noch mit Duennschichtchromatographie konnte ein zweiter Kofaktor nachgewiesen werden. Durch Expression von At-cry3 in einem Photolyase-defizienten E.-coli-Stamm und in vitro und in vivo Untersuchungen konnte gezeigt werden, dass At-cry3 keine Photolyaseaktivitaet besitzt. Ferner zeigten in vitro DNA-Bindungsstudien, dass At-cry3 sequenzunspezifisch an einzel- und doppelstraengige DNA bindet. Die Frage, ob At-cry3 eine Mutation in Synechocystis cry komplementieren kann, kann mit den vorliegenden Daten noch nicht abschliessend beantwortet werden. In Zusammenarbeit mit unserer AG hat Peter Lockhart, Massey University, New Zealand, einen Stammbaum mit ueber 70 Mitgliedern der Photolyase/Cryptochrom-Familie erstellt. Dieser deutet an, dass Pflanzen ihre Cryptochrome durch einen dualen horizontalen Gentransfer erhalten haben koennten: das CRY3 Gen von Cyanobakterien, den Vorlaeufern der Plastiden, Gene der CRY1/CRY2-Familie von Aplpha-Proteobakterien, den Vorlaeufern heutiger Mitochondrien.
机译:在这项工作中,来自蓝藻Synechocystis sp。的光解酶/隐色同源蛋白(cry和phr)。 PCC 6803和一种来自较高植物拟南芥的新型隐花色素(At-cry3)进行了表征。集胞藻CRY位于一个带有开放阅读框sll1628和sll1630的操纵子中。 sll1628编码的氨基酸序列与TPR(四肽重复序列)域蛋白的同源性差; sll1630的氨基酸序列与任何已知的蛋白质都不同源。对于在大肠杆菌中异源表达的集胞藻的哭声,可以证明它不与FAD共价结合。 phr和cry突变体在光自养和异养生长条件下,或在永久性蓝光或红光下,在生长和色素组成方面均未显示出与野生型不同的表型。与phr突变体和野生型相反,在UV-B中,在cry突变体中未诱导光系统II D1蛋白的从头合成。在cry突变体中,对红色和暗红色光的趋光性也降低了。使用定量RT-PCR分析,在较大的光谱范围内以及从低到高通量率变化时,研究了编码Photosystem II D1蛋白的psbA3基因转录的光依赖性诱导。除了cry突变体中的暗红色外,在选定的光照条件下,psbA3诱导减弱,尤其是在UV-A范围内。这项工作表明sll1629编码了一种隐色。在论文的第二部分中,研究了拟南芥中的At5g24850蛋白(At-cry3)。 At-cry3的大小为569个氨基酸,在400个氨基酸的范围内与拟音囊藻有大约50%的同一性。体外导入和GFP本地化研究表明,At-cry3的N末端63个氨基酸对于在线粒体和叶绿体中导入此蛋白都是必要和充分的。 At-cry3在大肠杆菌中异源表达为His-tag融合蛋白。光谱分析表明At-cry3不共价结合FAD。用光谱法或薄层色谱法都无法检测到第二个辅助因子。 At-cry3在缺乏光合酶的大肠杆菌菌株中的表达以及体外和体内研究表明,At-cry3没有光合酶的活性。体外DNA结合研究还显示,At-cry3与单链和双链DNA非序列特异性结合。 At-cry3是否可以补充集胞藻哭泣中的突变这一问题,尚不能用现有数据最终回答。与我们的股份公司合作,新西兰梅西大学的彼得·洛克哈特(Peter Lockhart)创建了一棵家谱,其中有70多个光合酶/隐色染料家族成员。这表明植物可能通过双重水平基因转移获得了其隐色染料:来自蓝细菌的CRY3基因(质体的前体),来自蓝藻蛋白细菌的CRY1 / CRY2家族的基因(当今的线粒体的前体)。

著录项

  • 作者

    Kleine Tatjana;

  • 作者单位
  • 年度 2003
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  • 原文格式 PDF
  • 正文语种 deu
  • 中图分类

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