声明
符号说明
1 前言
1.1 多粘类芽孢杆菌概述
1.2 形态分化概述
1.3 蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学的应用
1.4 本研究的目的和意义
2 材料和方法
2.1 引物
2.2 菌株,质粒和培养基
2.3 蛋白质提取
2.4 SDS-PAGE分离
2.5 FASP消化
2.6 TMT标记
2.7 高pH反相的肽分馏
2.8 磷酸肽富集
2.9 HPLC
2.10 LC-MS/MS分析
2.11 实验设计与统计分析
2.12 数据库检索和生物信息学分析
2.12.1 数据库检索
2.12.2 GO功能注释
2.12.3 蛋白质聚类分析
2.12.4 蛋白质相互作用网络分析
2.13 5'RACE实验
2.13.1 引物的设计及序列
2.13.2 目的基因第一链cDNA的合成
2.13.3 末端加多聚C
2.13.4 PCR第一轮扩增
2.13.5 PCR第二轮扩增
2.13.6电泳检测
2.14 生长曲线和活细胞计数
2.15 活/死细胞染色及鉴别
2.16 透射电子显微镜(TEM)分析超微结构
2.16.1 TEM取材
2.16.2细胞的处理及透射电子显微镜观察
2.17 抗真菌活性测定
2.18 fus基因簇的启动子活性分析
2.18.1 PCR反应体系
2.18.2 质粒pHY300PLK
2.19 表达载体的构建和蛋白纯化
2.19.1 表达载体pET30a-DegU,pET30a-DegS,pET30a-AbrB的构建
2.19.2 定点突变载体pET30a-DegUT239A的构建
2.19.3 蛋白表达及纯化
2.20 凝胶迁移实验(EMSA)
2.20.1 EMSA胶(非变性聚丙烯胺凝胶)的配制
2.20.2 EMSA结合反应
2.20.3 EMSA实验故障排除
3 结果与分析
3.1 蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学共同定量结果
3.2 差异蛋白质和磷酸化蛋白质的功能表征和注释
3.3 全细胞差异的蛋白质组和磷酸化蛋白质组分析及交互网络构建
3.4 形态分化影响细胞活力和细胞壁的形成
3.5 磷酸化位点的序列Motif和“分子开关”DegU分析
3.6 DegU和AbrB3协同调节Fusaricidin的表达
4 讨论
5 结论
参考文献
附录
附录1 质谱(MS)分析鉴定的PrkC磷酸化位点
附录2 TMT定量蛋白组学分析的差异蛋白
附录3 通过LC-MS/MS鉴定的蛋白质中的磷酸化肽段
致谢
山东农业大学;