光学活性LACTISOL制备及其对无根绿豆芽培育的研究

摘要

绿豆芽营养丰富、口感良好，深受人们喜爱，市场需求量很大。2，4-D、赤霉素等物质被不法商贩用于生产无根豆芽谋取利益。随着人们对食品安全的重视，这些物质已逐渐被禁止使用。而采用一般的培育方法，无法满足人们对无根豆芽的需求，寻找新的安全无毒的无根豆芽剂具有重要的意义。
　　Lactisol是一种来源于咖啡豆的天然物质。本文为寻找新的无根豆芽剂，进行了lactisol对绿豆芽形态和生化成分的研究，分析了lactisol作为无根豆芽剂的可行性。本文的研究内容主要包括:
　　1.本文通过两条路线制备R-lactisol:
　　(1)以L-丙氨酸经重氮化反应得到S-2-氯丙酸，再将S-2-氯丙酸与对甲氧基苯酚反应得到R-lactisol;
　　(2)以D-乳酸甲酯、固体光气为原料反应通过羟基的氯代得到S-2-氯丙酸甲酯，再将其与对甲氧基苯酚反应得到R-lactisol。
　　这两种方法制得lactisol的e.e值接近90％，进一步提纯，可超过98％。
　　2.探索了Novozym-435脂肪酶拆分外消旋体lactisol。研究表明，以lactisol乙酯和1，4-丁二胺为底物，叔丁醇为溶剂，在30℃下，拆分效果最好，当lactisol乙酯的转化率达到54％时，lactisol的e.e值可达到43％。
　　3.探索了lactisol对绿豆芽培育的影响，研究结果如下:
　　(1)通过人工气候箱培育绿豆芽，在培育期的第二天和第三天分别施用了200ppm R-lactisol、200 ppm S-lactisol和200 ppm R/S-lactisol，共培育6天，研究了它们对绿豆芽形态的影响。研究表明，与水对照组相比，R-lactisol处理组和R/S-lactisol处理组均能有效减少豆芽侧根数目，缩短豆芽主根长度(P＜0.05)。其中R-lactisol处理组的效果最好，与水对照组相比，该处理组可使绿豆芽根长缩短60.78％，侧根数减少50.00％;
　　(2)在(1)的研究基础上，进一步研究了连续施用浓度为1-5 ppm的R-lactisol对绿豆芽形态的影响。研究表明，4 ppm的R-lactisol处理组效果最优，与水对照组相比，该处理组可以使绿豆芽主根长缩短67.50％，侧根数减少60.00％;
　　(3)在(2)的研究基础上，进一步研究了连续施用浓度为3 ppm、5 ppm、7.5 ppm、10 ppm R-lactisol，并在第3d时用5 ppm6-BA培育2h，培育6天。研究表明，与水对照组相比，各处理组均可使绿豆芽根长明显缩短，侧根数明显减少，直径明显增大(P＜0.05)。其中3 ppm的R-lactisol和6-BA复配处理组的综合效果最优，与水对照组相比，该处理组可以使绿豆芽根长缩短67.21％，侧根数减少88.89％，产量增加50％;
　　(4)研究了不同的培育剂对绿豆芽的效果。在豆芽培育的第2d和第3d分别施用75 ppm R-lactisol或75 ppm2，4-D，其中复配组在第3d时还用5 ppm6-BA培育2h，培育6天。研究表明，R-lactisol和6-BA复配处理组的效果最优，与水对照组相比，该处理组可以使绿豆芽根长缩短57.37％，完全抑制侧根生成，直径增粗10.82％，在鲜重几乎相同的情况下，根重减少53.33％。各处理组豆芽的可溶性蛋白含量、可溶性糖含量均低于水对照组;各处理组的维生素C和γ-氨基丁酸含量均高于水对照组。
　　Lactisol对无根豆芽的培育具有潜在价值。

目录

声明

摘要

缩略语表

1．1 无根芽苗菜概述

1．2 无根芽苗莱培育剂

1．2．1 生长素类无根培育剂

1．2．2 赤霉素类无根培育剂

1．2．3 细胞分裂素类无根培育剂

1．2．4 乙烯

1．3 无根芽苗菜培育剂的安全隐患

1．3．2 无根培育剂4-氯苯氧乙酸钠的安全隐患

1．3．2 无根培育剂赤霉素的安全隐患

1．3．4 无根培育剂乙烯的安全隐患

1．4 芽苗菜的营养物质和保健成分

1．4．2 γ-氨基丁酸的保健功能、检测方法和富集

1．5 本课题研究内容及意义

1．5．1 本课题的意义

1．5．2 本课题的主要研究内容

2．1 引言

2．2 实验仪器与试剂

2．2．1 实验试剂

2．2．2 实验仪器

2．3 目标化合物的合成

2．3．2 乳酸酯法合成R-lactisol

2．4 反应温度对合成R-lactisol的影响

2．4．2 反应温度对乳酸酯法合成R-lactisol的影响

2．5 实验结果与讨论

2．5．4 S-2-氯丙酸甲酯制备R-lactisol

2．5．5 产物的高效液相色谱分析

2．6 实验小结

3．1 引言

3．2 实验试剂与仪器设备

3．2．1 实验使用仪器

3．2．2 实验试剂

3．3 实验方法

3．3．1 Novozym-435脂肪酶氨解拆分lactisol

3．3．2 拆分条件对拆分lactisol效果的影响

3．4 实验结果与分析

3．4．1 Lactisol酯的高效液相色谱分析条件

3．4．2 二胺氨解lactisol酯的色谱条件探索及产物确认

3．4．3 氨解条件对拆分lactisol的影响

3．5 实验小结

4．1 引言

4．2 实验仪器与试剂

4．2．1 实验试剂

4．2．2 实验仪器

4．3 Lactisol对绿豆芽形态的影响

4．3．1 不同光学纯Lactisol对绿豆芽形态的影响

4．3．2 R-Lactisol浓度对绿豆芽形态的影响

4．3．3 R-lactisol和6-BA复配对绿豆芽形态的影响

4．4 不同培育剂对绿豆芽形态和生化指标的比较研究

4．4．1 绿豆种子发芽和处理

4．4．2 不同培育剂对绿豆芽可溶性蛋白含量的影响

4．4．3 不同培育剂对绿豆芽可溶性糖含量的影响

4．4．4 不同培育剂对绿豆芽维生素C含量的影响

4．5．2 不同浓度R-lactislo对绿豆芽形态的影响

4．5．3 R-lactisol和6-BA复配对绿豆芽形态的影响

4．5．4 不同培育剂对绿豆芽形态和生化指标的比较研究

4．6 实验小结

第五章 结论与展望

参考文献

附录

致谢