声明
论文说明
摘要
缩略语的中英文对照
第一章 组蛋白H3K79甲基转移酶Dot1/KMT4及H3K79甲基化研究进展
1 组蛋白共价修饰概述
1.1 组蛋白甲基化
1.2 组蛋白的乙酰化和去乙酰化
1.3 组蛋白的磷酸化
1.4 组蛋白泛素化
2 组蛋白修饰在配子形成和胚胎发育中的作用
3 Dot1及H3K79甲基化的研究进展
3.1 DOT1的分子结构及甲基化机制
3.2 Dot1/DOT1L(DOT1-Like)的分子结构以及催化H3K79甲基化的原理
3.3 Dot1的催化功能需要H4尾巴的参与
3.4 H2B泛素化对Dot1催化H3K79三甲基化功能的调节
3.5 DotCom复合体及Dot1-MLL复合体的工作原理
3.6 Dot1和H3K79甲基化在有丝分裂细胞周期调控和DSBs修复中的作用
3.7 DOT1参与监控DNA损伤的检验点机制
3.8 Dot1l参与细胞内DNA损伤修复过程
3.9 DOT1在端粒沉默区域的作用
3.10 Dot1在减数分裂粗线期检验点的功能
3.11 Dot1和H3K79me在发育中的作用
4 本研究目的与意义
参考文献
第二章 胞质注射Dot1l siRNA对小鼠卵母细胞减数分裂的影响
1 材料与方法
1.1 实验动物
1.2 试剂与仪器
1.3 溶液配制
1.4 Dot1l siRNA的设计、合成和稀释分装
1.5 GV期卵母细胞的获取
1.6 GV期卵母细胞显微注射
1.7 GV期卵母细胞的体外成熟(IVM)培养
1.8 常规免疫荧光检测
1.9 免疫荧光相对定量分析
1.10 小鼠卵母细胞cDNA模板的合成
1.11 实时荧光定量RT-PCR
1.12 卵母细胞的Westernblot分析
1.13 数据统计分析
2 结果
2.1 小鼠卵母细胞减数分裂过程中Dot1l、H3K79二甲基化(me2)和三甲基化(me3)的变化
2.2 小鼠卵母细胞减数分裂过程中Dot1l mRNA的存留
2.3 注射Dot1l siRNA后GV期卵母细胞中Dot1l mRNA水平下降
2.4 注射Dot1l siRNA对GV期卵母细胞内Dot1l蛋白含量的影响
2.5 Dot1l siRNA注射对GV期卵母细胞内H3K79me2含量的影响
2.6 Dot1l siRNA注射对卵母细胞减数分裂的影响
2.7 注射Dot1l siRNA可以保持检验点蛋白BubR1在染色体端粒的驻留
2.8 幼龄小鼠和老龄小鼠卵母细胞中H3K79甲基化水平比较
2.9 注射Dot1l siRNA的卵母细胞乙酰化水平升高
3.讨论
3.1 Dot1l及H3K79甲基化在小鼠GV期到MⅡ期卵母细胞中的分布
3.2 通过显微注射siRNA干涉卵母细胞内目标基因的可行性
3.3 干涉Dot1l阻滞小鼠卵母细胞进入MⅠ后期
3.4 老龄小鼠卵母细胞中H3K79甲基化水平下降
3.5 干涉Dot1l表达引起小鼠卵母细胞的乙酰化水平升高
参考文献
第三章 干涉小鼠原核期Dot1l的表达对胚胎发育的影响
1 材料与方法
1.1 实验动物
1.2 试剂与仪器
1.3 溶液配制
1.4 Dot1l siRNA的设计、合成和稀释分装
1.5 体外受精(IVF)及胚胎培养
1.6 原核期胚胎显微注射
1.7 胚胎的体外培养(IVC)
1.8 小鼠胚胎细胞cDNA模板的合成
1.9 实时荧光定量RT-PCR
1.10 常规免疫荧光检测
1.11 转录活性检测
1.12 早期胚胎TUNEL凋亡检测
1.13 免疫荧光相对定量分析
1.14 囊胚细胞核型分析
1.15 数据统计分析
2 结果
2.1 原核期胞质注射siRNA后2-细胞胚胎Dot1l mRNA的含量下降
2.2 原核期胞质注射siRNA后4-细胞间期胚胎Dot1l蛋白含量下降
2.3 原核期胞质注射siRNA后4-细胞有丝分裂期胚胎H3K79me2水平下降
2.4 原核期胞质注射siRNA后小鼠附植前胚胎的发育率降低
2.5 原核期胞质注射siRNA后小鼠囊胚细胞数减少
2.6 原核期胞质注射siRNA后小鼠胚胎的体外转录活性并未降低
2.7 原核期胞质注射siRNA后小鼠胚胎的细胞凋亡率增加
2.8 原核期胞质注射siRNA后小鼠胚胎的非整倍体率增加
3 讨论
参考文献
全文结论
创新
附录
1 文中未提及的试剂及耗材
1.1 抗体货号及分装保存
1.2 其他试剂及耗材
2 主要仪器
3 主要溶液的配制
3.1 HTF、M2液配制方法
3.2 KSOM培养液配方
3.3 M2I、IVM和IVMI液的配制
3.4 酸性台式液的配制
3.5 简易PBS配方
3.6 部分试剂工作液或浓储液的配制
致谢
博士研究生期间发表的文章
南京农业大学;